Bài báo khoa học Tập 66 Số CĐ4-NCKH 15/04/2025

31. NGHIÊN CỨU ĐỘT BIẾN GEN Pvcrt LIÊN QUAN ĐẾN KHÁNG CHLOROQUINE Ở PLASMODIUM VIVAX TẠI MƯỜNG TÈ, LAI CHÂU BẰNG REAL-TIME PCR VÀ GIẢI TRÌNH TỰ TOÀN BỘ HỆ GEN

Nguyễn Quang Thiều1,2, Nguyễn Thị Hồng Ngọc1,2, Nguyễn Thị Phượng3,4, Nguyễn Thị Hương Bình1,2, Nguyễn Vân Hồng1,2, Nguyễn Đức Giang1,2
1 National Institute of Malariology, Parasitology and Entomology
2 Viện Sốt rét, Ký sinh trùng và Côn trùng Trung ương
3 Hanoi University of Public Health
4 Trường Đại học Y tế Công cộng
Tác giả liên hệ: thieunq@gmail.com
DOI: 10.52163/yhc.v66iCD4.2349
14 Lượt xem
15 Lượt tải xuống
Từ khóa
Plasmodium vivax Pvcrt kháng Chloroquine đột biến gen biểu hiện gen
Tóm tắt

Mục tiêu: Nghiên cứu nhằm đánh giá mức độ biểu hiện và đột biến gen Pvcrt liên quan đến kháng Chloroquine ở Plasmodium vivax tại huyện Mường Tè, tỉnh Lai Châu, Việt Nam.

Phương pháp: Nghiên cứu mô tả cắt ngang trên 48 mẫu máu dương tính P. vivax, thu thập từ tháng 10/2022-3/2024. Biểu hiện Pvcrt được định lượng bằng qPCR, đột biến được xác định qua giải trình tự toàn bộ hệ gen Illumina. Bổ sung tổng quan tài liệu quốc tế từ 2008-2023 về gen Pvcrt và kháng Chloroquine.

Kết quả: 14,6% mẫu có biểu hiện Pvcrt tăng cao, 4,2% mang đột biến C350T, 12,5% có chèn codon 10 (K10). Mối liên hệ giữa C350T và tăng biểu hiện Pvcrt có ý nghĩa thống kê (p < 0,05). Tổng quan tài liệu khẳng định vai trò của Pvcrt trong kháng thuốc tại nhiều khu vực Đông Nam Á và Nam Á.

Kết luận: Pvcrt là chỉ dấu tiềm năng trong giám sát kháng Chloroquine ở P. vivax. Khuyến nghị phân tích biểu hiện và đột biến Pvcrt vào chương trình giám sát sốt rét tại Việt Nam.

Tài liệu tham khảo
[1]
World Health Organization, World Malaria Report 2021, Geneva, 2021. Google Scholar
[2]
Baird J.K, Hoffman S.L, White N.J, Resistance to therapies for infection by Plasmodium vivax, Clin Microbiol Rev. 2009, 22 (3): 508-534. Google Scholar
[3]
Melo G.C, Monteiro W.M, Siqueira A.M et al, Expression levels of pvcrt-o and pvmdr-1 are associated with chloroquine resistance and severe Plasmodium vivax malaria in patients of the Brazilian Amazon, PloS One, 2014, 9 (8): e105922. Google Scholar
[4]
Barnadas C, Ratsimbasoa A, Tichit M et al, P. vivax resistance to Chloroquine in Madagascar: clinical efficacy and polymorphisms in pvcrt-o and pvmdr1 genes, Antimicrob Agents Chemother, 2008, 52 (12): 4233-4240. Google Scholar
[5]
Sharma A, Rawal C, Jindal A et al, Expression pattern of pvcrt-o and polymorphisms in P. vivax isolates from India, Acta Tropica, 2022, 230: 106370. Google Scholar
[6]
Amato R, Pearson R.D, Almagro-Garcia J et al, Origins of the current outbreak of multidrug-resistant malaria in Southeast Asia, Nat Microbiol, 2018, 3: 1195-1205. Google Scholar
[7]
Cingolani P, Platts A, Wang L.L et al, A program for annotating and predicting the effects of SNPs, SnpEff, Fly, 2012, 6 (2): 80-92. Google Scholar
[8]
Miotto O, Amato R, Ashley E.A et al, Genetic architecture of artemisinin-resistant Plasmodium falciparum, Nat Genet, 2015, 47 (3): 226-234. Google Scholar
[9]
McKenna A, Hanna M, Banks E et al, The Genome Analysis Toolkit: A MapReduce framework for analyzing next-generation DNA sequencing data, Genome Res, 2010, 20 (9): 1297-1303. Google Scholar
[10]
Li H, Durbin R, Lam T.W et al, Fast and accurate short read alignment with Burrows-Wheeler transform, Bioinformatics, 2009, 25 (14): 1754-1760. Google Scholar
[11]
Alexander D.H, Novembre J, Lange K, Fast model-based estimation of ancestry in unrelated individuals, Genome Res, 2009, 19 (9): 1655-1664. Google Scholar
[12]
Price R.N, Douglas N.M, Anstey N.M, New developments in Plasmodium vivax malaria: severe disease and the rise of Chloroquine resistance, Curr Opin Infect Dis, 2009, 22 (5): 430-435. Google Scholar