Bài báo khoa học Tập 67 Số 8 28/08/2026

TỔNG QUAN ĐÁNH GIÁ ẢNH HƯỞNG CỦA CÁC DUNG DỊCH RỬA MŨI LÊN VẬN ĐỘNG LÔNG CHUYỂN NIÊM MẠC MŨI XOANG NGƯỜI

Trịnh Thị Hiền Lương1,2, Đỗ Bá Hưng3,4
1 Hanoi Medical University
2 Trường Đại học Y Hà Nội
3 National Otolaryngology Hospital
4 Bệnh viện Tai Mũi Họng Trung ương
DOI: 10.52163/yhc.v67i8.6329
13 Lượt xem
0 Lượt tải xuống
Tóm tắt

Mục tiêu: Đánh giá tổng quan này nhằm mục đích tổng hợp các bằng chứng hiện có liên quan đến tác động của các dung dịch muối sinh lý khác nhau lên tần số đập của lông chuyển xoang mũi ở người.

Phương pháp: Tổng quan luận điểm, lấy dữ liệu PubMed, Google Scholar, Semantic Scholar, bài báo tiếng Anh về ảnh hưởng của dung dịch muối rửa mũi lên tần số đập lông chuyển.

Kết quả: 10 bài báo đo tần số đập lông chuyển, chịu ảnh hưởng bởi nồng độ và thành phần dung dịch. Dung dịch nhược trương và đa số đẳng trương (4/6 nghiên cứu) làm tần số đập lông chuyển không đổi. Dung dịch ưu trương (≥ 3,0%) gây giảm tần số đập lông chuyển trên invitro nhưng tăng trên exvivo. Với vi khoáng chất: các dung dịch giàu Ca2+, K+ hoặc bổ sung Cu2+, Mn2+ giúp duy trì hoặc tăng tần số đập lông chuyển; thiếu hụt Ca2+ làm giảm tần số đập lông chuyển. Với hệ đệm: tăng nồng độ Cl- nội bào hoặc loại bỏ anion  đều gây giảm tần số đập lông chuyển.

Kết luận: Dung dịch rửa mũi tối ưu cần an toàn với tế bào và kích thích lông chuyển. Nên ưu tiên dạng đẳng trương bổ sung khoáng chất (Ca2+, K+, Cu2+, Mn2+), cùng hệ đệm giàu , ít Cl- để duy trì sinh lý tế bào và tăng tần số đập lông chuyển tối đa.

Tài liệu tham khảo
[1]
Tricco A.C, Lillie E, Zarin W et al. PRISMA extension for scoping reviews (PRISMA-ScR): checklist and explanation. Ann Intern Med, 2018, 169 (7): 467-473. doi: 10.7326/M18-0850 Google Scholar
[2]
Boek W.M, Keleş N, Graamans K, Huizing E.H. Physiologic and hypertonic saline solutions impair ciliary activity in vitro. The Laryngoscope, 1999, 109 (3): 396-399. doi: 10.1097/00005537-199903000-00010 Google Scholar
[3]
Wabnitz D.A.M, Wormald P.J. A blinded, randomized, controlled study on the effect of buffered 0.9% and 3% sodium chloride intranasal sprays on ciliary beat frequency. The Laryngoscope, 2005, 115 (5): 803-805. doi: 10.1097/01.MLG.0000157284.93280.F5 Google Scholar
[4]
Lee K.S, Lee C.H, Min Y.G, Rhee C.S et al. Effects of saline solution on ciliary movement in human nasal epithelium in vitro. J Rhinol, 2000, 7 (2): 132-136. Google Scholar
[5]
Min Y.G, Lee K.S, Yun J.B et al. Hypertonic saline decreases ciliary movement in human nasal epithelium in vitro. Otolaryngol Head Neck Surg, 2001, 124 (3): 313-316. doi: 10.1067/mhn.2001.113145 Google Scholar
[6]
Jiao J, Yang J, Li J, Li Y, Zhang L. Hypertonic saline and seawater solutions damage sinonasal epithelial cell air‐liquid interface cultures. Int Forum Allergy Rhinol, 2020, 10 (1): 59-68. doi: 10.1002/alr.22459 Google Scholar
[7]
Bonnomet A, Luczka E, Coraux C, De Gabory L. Non-diluted seawater enhances nasal ciliary beat frequency and wound repair speed compared to diluted seawater and normal saline: seawater superior to saline on CBF and WRS. Int Forum Allergy Rhinol, 2016, 6 (10): 1062-1068. doi: 10.1002/alr.21782 Google Scholar
[8]
Constant S, Saaid A, Jimenez-Chobillon M.A. Efficacy and safety evaluation of a hypertonic seawater solution enriched with manganese and copper salts. Rhinol Online, 2021, 4 (4): 113-119. doi: 10.4193/RHINOL/21.021 Google Scholar
[9]
Yasuda M, Inui T.A, Hirano S et al. Intracellular Cl- regulation of ciliary beating in ciliated human nasal epithelial cells: frequency and distance of ciliary beating observed by high-speed video microscopy. Int J Mol Sci, 2020, 21 (11): 4052. doi: 10.3390/ijms21114052 Google Scholar
[10]
Okamoto S, Yasuda M, Kawaguchi K et al. Ciliary motility decreased by a CO2/HCO3- free solution in ciliated human nasal epithelial cells having a pH elevated by carbonic anhydrase IV. Int J Mol Sci, 2024, 25 (16): 9069. doi: 10.3390/ijms25169069 Google Scholar
[11]
Do B.H, Ohbuchi T, Wakasugi T et al. Acetylcholine-induced ciliary beat of the human nasal mucosa is regulated by the Pannexin-1 channel and purinergic P2X receptor. Am J Rhinol Allergy, 2018, 32 (4): 217-227. doi: 10.1177/1945892418770292 Google Scholar